1、材料與方法
    1.1供試材料
    1.1.1供試藥劑50%多菌靈可濕性粉劑、70%代森猛鋅可濕性粉劑、Yl一1、57.6%冠菌清干粒劑、50%撲海因懸浮劑、75%百菌清可濕性粉劑。
    1.1.2供試菌種微球菌（Micrococcus）、葡萄球菌（Staphylococcus）、棕曲霉、黑曲霉、黑青霉、杜氏青霉都是從被污染的培養(yǎng)植物上分離純化獲得。

    1.1.3培養(yǎng)基YEB培養(yǎng)基；PDA培養(yǎng)基。
    1.2試驗(yàn)方法
    1.2.1污染細(xì)菌鑒定革蘭氏染色法初步鑒定細(xì)菌。
    1.2.2抑菌強(qiáng)度測(cè)定無(wú)菌水稀釋藥劑成1000mg/L。細(xì)菌取0.2mL對(duì)數(shù)期菌懸液（真菌取0.2mL孢子菌懸液（106個(gè)／mL)）與20mLYEB（真菌PDA）培養(yǎng)基混勻倒平板．凝固后每一平板置2個(gè)牛津杯（直徑8mm)，一杯加O.2mL藥劑，另一杯以無(wú)菌水作對(duì)照，置于28℃溫箱培養(yǎng)，葡萄球菌培養(yǎng)24h、微球菌和真菌培養(yǎng)48h后，取出測(cè)抑菌圈直徑。
    1.2.3細(xì)菌最低抑菌濃度測(cè)定用無(wú)菌水稀釋藥劑成2000mg/L原液，然后按1:2,1:4,l:8．二稀釋至15.625mg/L，余下均同1.2.2.
    1.2.4菌絲生長(zhǎng)抑制實(shí)驗(yàn)用無(wú)菌水配制成106個(gè)／mL孢子懸浮液，分別取0.2mL孢子懸浮液與20mLPDA培養(yǎng)基混勻倒平板，28℃溫箱遮光培養(yǎng)48h后備用．用無(wú)菌水稀釋藥劑成2000mg/L原液，然后配制成1000,500,250……0.9765625mg/L的含藥培養(yǎng)基，對(duì)照為不加藥的培養(yǎng)基。用打孔器（直徑7mm）從備用平板中打取菌餅，菌絲面朝下接種于含藥培養(yǎng)基中央，每平板加一個(gè)菌餅，3次重復(fù)，28℃溫箱遮光培養(yǎng)，每2d取出測(cè)量菌落直徑。
    生長(zhǎng)抑制率（%）={（對(duì)照菌落直徑一菌餅直徑）一（處理菌落直徑一菌餅直徑）/（對(duì)照菌落直徑一菌餅直徑）}*100%
    1.2.5袍子萌發(fā)抑制試驗(yàn)將孢子接種于液體PDA中，于28℃、130rad/min搖床上培養(yǎng)24h，雙層紗布過(guò)濾后用無(wú)菌水調(diào)制成104個(gè)／mL備用。用無(wú)菌水稀釋藥劑成2000mg/L的原液，然后配制成1000、250、62.5……0.9765625mg/L的含藥培養(yǎng)基．分別取2mL孢子懸浮液與不同濃度的含藥培養(yǎng)基混勻，3次重復(fù)，28℃培養(yǎng)，72h后鏡檢計(jì)算孢子萌發(fā)抑制率.
    孢子萌發(fā)抑制率（%）={（對(duì)照萌發(fā)率一處理萌發(fā)率）／對(duì)照萌發(fā)率｝x100%
    1.2.6對(duì)植物生長(zhǎng)抑制試驗(yàn)與開(kāi)放組培初探用無(wú)菌水配制藥劑成2000mg/L原液，4000rad/min離心10min，上清液用孔徑20nm的濾膜過(guò)濾備用。將濾好的原液與培養(yǎng)基混合配制成1000、250、62.5mg/L的含藥培養(yǎng)基。取健壯的馬鈴薯試管苗剪成小段，接種于上述含藥培養(yǎng)基，對(duì)照為不加藥的培養(yǎng)基，每梯度6瓶，每瓶10株，其中3瓶正常放置，3od后觀察馬鈴薯生長(zhǎng)情況，另外3瓶開(kāi)口放置，20d后觀察馬鈴薯的污染情況。